• 8-495-22-555-6-8
  • 1@trauma.ru
  • Прайслист
  • Контакты
  • WhatsApp
  • Telegram
  • Дзен
  • YouTube
  • FAQ
  • Отзывы
МосРентген Центр
МосРентген Центр
Первая помощь при переломе шейки бедра
  • Услуги
    • МРТ 3 Тесла
    • Трехмерная компьютерная томография
    • Лицензирование рентгеновских кабинетов
  • Товары
    • Цифровой рентген
      • Аппараты для цифрового рентгена
      • Оцифровщики
      • Дигитайзеры
    • Аналоговый рентген
      • Рентгеновская пленка
      • Рентгеновские кассеты
      • Хим. реактивы
  • Статьи
    • Травматология
    • Рентгенология
  • Блог
  • МЕНЮ ЗАКРЫТЬ назад  
МосРентген Центр
 /  Статьи компании МосРентген Центр

Ультразвуковая аблация опухоли: иммунные эффекты и перспективы интеграции в современные программы лечения генерализованного рака

Ультразвуковая аблация опухоли: иммунные эффекты и перспективы интеграции в современные программы лечения генерализованного рака 04.10.2024

Ультразвуковая аблация опухоли: иммунные эффекты и перспективы интеграции в современные программы лечения генерализованного рака

Несмотря на революционные открытия последних лет в области молекулярной онкологии и иммунологии, выжи­ваемость при генерализованных формах злокачественных новообразований не превышает 20-30%, поэтому поиск новых терапевтических подходов остается актуальной задачей

Введение


Несмотря на недавние революционные открытия в об­ласти молекулярной онкологии и иммунологии, выжива­емость при генерализованных формах рака в целом про­должает оставаться низкой как в России, так и за рубежом [1-3]. 

Поиск новых терапевтических подходов по-преж­нему актуален, и одним из наиболее активно развиваю­щихся направлений в последние годы по праву считается иммуноонкология. 

Она получила мощный импульс после открытия ряда механизмов ускользания злокачественных новообразований от иммунного ответа, когда выяснилось, что для своей клональной экспансии опухоли могут ис­пользовать локальные и системные иммуносупрессивные механизмы, предотвращающие в обычных условиях ауто­иммунные реакции [4]. 

На этой теоретической базе был создан новый класс препаратов - ингибиторы контроль­ных точек (ИКТ), в частности CTLA-4 и PD1 /PD-1L, кото­рые показали обнадеживающие результаты при лечении некоторых фатальных до недавних пор злокачественных опухолей [5-10].

Одним из итогов произошедшей в терапии рака револю­ции стал пересмотр существующих парадигм, смещающий акцент в сторону коррекции нарушений функционирова­ния иммунной системы, восстановления ее способности распознавать и элиминировать трансформированные клет­ки. Это подход отличается от традиционной концепции ле­чения рака, которая нацелена на прямое уничтожение опу­холевых клеток цитостатиками, таргетными препаратами, ионизирующим излучением или аблацией. Иммунотера­пия обладает рядом преимуществ перед этими методами, в частности специфичностью, возможностью генерации поликлонального Т-клеточного ответа, преодолевающего резистентность опухолевых клеток, и развитием иммуно­логической памяти. Кроме этого, эффекты иммунотера­пии более продолжительны и сохраняются в большинстве случаев после окончания лечения, чего не наблюдается при химиотерапии или таргетной терапии, к которым рано или поздно развивается резистентность.


В данном обзоре представлены основные тенденции в современной иммуноонкологии с акцентом на роль уль­тразвуковой аблации как способа повышения иммуно- генности опухолей и составной части комбинированного лечения запущенных форм злокачественных новообразо­ваний.

Современная иммунотерапия позволяет контролиро­вать диссеминированный процесс не более чем у 20-30% пациентов, в остальных же случаях опухоли изначально устойчивы к иммунотерапии или становятся таковыми в процессе лечения. В связи с этим сегодня большое вни­мание уделяется причинам, ограничивающим эффектив­ность метода, и поиску путей их преодоления [4, 11, 12]. В этом контексте можно выделить несколько важных фак­торов:

• Низкая иммуногенность опухолей, которая может быть изначальной или появиться в процессе иммунного ре­дактирования, придающего новообразованиям призна­ки толерантности и способность ускользать от иммун­ного ответа [4, 11, 12].

• Активное, генетически детерминированное противо­стояние врожденному или адаптивному иммунитету. Создание на уровне микроокружения опухоли эшело­нированной, многокомпонентной защиты, в частности препятствующей инфильтрации и/или физическому контакту иммунных клеток с опухолевыми или приво­дящей к истощению эффекторных лимфоцитов [4, 11, 12]. На запущенных стадиях опухоль противопоставляет иммунитету и иммунотерапии максимально эффектив­ную и часто непреодолимую систему обороны.

• Активация альтернативных механизмов подавления Т-лимфоцитов, например TIM-3, в ответ на блокаду PD-1/PD-1L [13].

• Отсутствие в течение многих лет концепции разно­направленного и индивидуализированного влияния на фазы иммунного цикла. Вакцины, Т-клеточная те­рапия, цитокинотерапия и ИКТ в монорежиме влияют на отдельные звенья иммунной системы, что, как пра­вило, малопродуктивно, особенно при диссеминации процесса [4, 11, 12].


Пути повышения эффективности иммунотерапии при диссеминированных формах рака

Анализ литературы последних лет позволил выделить несколько направлений, которые потенциально могут привести к дальнейшему прогрессу в иммунотерапии ге­нерализованных форм рака в условиях, когда расширение спектра активности ИКТ замедлилось, а их клиническая эффективность перестала существенно меняться. Эти на­правления можно обозначить следующим образом:

1. Достижение циторедуктивного эффекта, способствую­щего более успешной элиминации резидуальных прояв­лений заболевания.

2. Влияние на иммуногенность опухоли, индукция воспа­лительного фенотипа микроокружения, более воспри­имчивого к иммунотерапии ИКТ.

3. Выявление наиболее значимых механизмов иммуносу­прессии на системном уровне, в микроокружении пер­вичной опухоли и метастазах.

4. Разработка критериев мониторинга иммунного статуса и клинических проявлений в процессе иммунотерапии, раннее выявление резистентности и ее преодоление.

5. Разнонаправленное влияние на фазы иммунного цикла с целью генерации или восстановления эффективного противоопухолевого иммунного ответа.

Одной из целей современной иммунотерапии при дис­семинированном раке является индукция абскопального эффекта (АЭ) (ab - отдаленный, scopus - цель), который под разными названиями известен уже более ста лет [ 14, 15]. Напоминая спонтанную регрессию, этот феномен за­ключается в иммунологически опосредованной регрессии отдаленных метастазов после физического воздействия на ограниченное количество опухолевых узлов. Их облу­чение или аблация, помимо циторедукции и подавления иммуносупрессивных сигналов, приводит к иммуноген­ной клеточной смерти (ИКС). Она характеризуется выбро­сом антигенов/неоантигенов, воспалительных цитокинов, хемокинов и аларминов или сигналов опасности (белки теплового шока, амфотерин, АТФ, IL-1, белки S-100 и др.), необходимых для последующей активации и созревания антиген-презентирующих клеток (АПК) [16]. После при- мирования (англ, priming), активации и пролиферации CD4+ и CD8+ цитотоксических Т-лимфоцитов, их мигра­ции и инфильтрации отдаленных метастатических очагов наступает специфическое уничтожение опухолевых кле­ток с сохранением иммунологической памяти.

До недавнего времени редкие АЭ описывались преи­мущественно после паллиативного облучения отдельных метастазов [15]. Дополнение локальных методов физиче­ского воздействия возможностями современной иммуно­терапии привело к повышению частоты АЭ как в экспери­ментальных моделях, так и в условиях клиники [17-20]. С учетом новых сведений об иммунологических меха­низмах АЭ сегодня есть все основания полагать, что этот феномен может перейти из категории редких и плохо объяснимых событий в разряд научно обоснованных и создаваемых в клинических условиях явлений. В этом контексте особое значение придается дальнейшему изуче­нию путей усиления иммуногенности опухолей и преодо­лению механизмов иммуносупрессии на этапах иммунно­го цикла. Остановимся подробней на некоторых аспектах данной проблемы.

Классическим методом индукции собственного про­тивоопухолевого иммунитета является вакцинирование.

Контакт иммунной системы с различными опухоль-ас- социированными факторами способствует развитию специфического гуморального и клеточного иммуни­тета. Для стимуляции иммунного ответа традиционно используют аутологичные или аллогенные опухолевые клетки, дендритные клетки (ДК), активированные ex vivo в присутствие антигенов, опухолевые пептиды, белки се­мейства раково-тестикулярных антигенов (NY-ESO-1, MAGE-A3, PRAME, LAGE-1 и др.), фрагменты ДНК опу­холи, РНК (dsRNA, mRNA), белки теплового шока (БТШ), ганглиозиды и др. В качестве адъювантов, активирующих АПК, применяются BCG+GM-CSF [21], Iscomatrix [22], ОРТ-821 [23], imiquimod/resiquimod [24], CpG+IL-2 [25], IFN-a [26] и др.

Среди факторов, ограничивающих развитие эффек­тивного противоопухолевого иммунного ответа при вак­цинировании, ключевыми считаются низкая антигенность вакцинационного материала, узкий репертуар опухоль ассоциированных факторов, присутствие недоступ­ных для иммунной системы внутриклеточных антигенов, недостаточная активация ДК. В последние годы поиск решений ведется по нескольким направлениям, в част­ности разрабатываются персонифицированные вакцины, содержащие мутированные неоантигены, гиперэкспрессированные аутоантигены или тканеспецифичные белки [27]. Кроме этого изучаются новые источники иммуно­генных белков [28].

Отдельным направлением является применение раз­личных аблативных методик с целью так называемого вакцинирования in situ, т. е. создания в организме отно­сительно длительно функционирующего депо антигенов и иммуногенных факторов. Для физического воздействия на опухоль и индукции ИКС используются следующие ме­тоды: лучевая терапия в аблативном режиме; гипертерми­ческие аблации - радиочастотная (РЧА), микроволновая (MBA), ультразвуковая (УЗА), лазерная; низкотемператур­ные - криоаблация (КА), фотодинамические эффекты, не­обратимая электропорация и др.

В этом ряду большой интерес представляет ультраз­вуковое воздействие на опухолевую ткань, которое в по­следние годы все чаще рассматривается как составная часть современных программ иммунотерапии и как по­тенциальный способ улучшения результатов лечения ме­тастатического рака [20, 29, 30].

Иммунные эффекты ультразвуковой аблации опухолей УЗА, которая в классическом варианте подразумева­ет использование высокоинтенсивного фокусированного ультразвука (англ. HIFU - high intensity focused ultrasound), воздействует на ткани непрерывными волнами, повы­шая локальную температуру до 60-100 °С [31]. Уже че­рез несколько секунд в очаге соникации (ультразвуково­го воздействия) происходит денатурация белков, разрыв и слияние клеточных мембран, пикноз, гиперхромазия, и в финале наступает коагуляционный некроз опухоли и ее сосудистой сети [32]. На периферии очага аблации (переходная зона) температура не достигает летальных значений, поэтому смерть клеток происходит путем апоп­тоза, пик которого приходится на второй час после про­цедуры [33]. Термическому воздействию сопутствует эффект кавитации, возникающий при взаимодействии акустического поля с газовыми тельцами, расположен­ными на субклеточном уровне, в органеллах и жидкостях. Во время разрушения пузырьков акустическое давление в очаге достигает нескольких тысяч паскаль. При более со­временных режимах УЗА - механической ультразвуковой аблации или гистотрипсии, когда волны высокой энергии имеют импульсный характер, наступает субклеточная фрагментация тканей без их прогревания [34, 35].

Важным результатом аблации является циторедуктив­ный эффект и уменьшение системных иммунносупрессив­ных сигналов со стороны опухоли. Кроме этого, аблация позволяет создать депо лизированных клеток in situ. 

Фор­мирование опухолевого дебриса сопровождается ИКС, т. е. выбросом антигенов в микроокружение опухоли, их попа­данием в локально-регионарную лимфатическую систему, высвобождением воспалительных цитокинов, аларминов, притягивающих и активирующих АПК (макрофаги и ДК). Также разрушаются стромальные элементы микроокру­жения, которые прямо или косвенно препятствуют фи­зическому контакту эффекторных лимфоцитов с опухо­левыми клетками.

 Разрушение этих барьеров облегчает инфильтрацию опухоли цитотоксическими Т-лимфоцита­ми [36].

Перифокальная апоптотическая смерть опухолевых клеток традиционно считается иммуносупрессивной, по­скольку не сопровождается активацией и костимуляцией АПК (сигнал 2), хотя в последние годы эта концепция пересматривается [37]. Репаративные процессы в зоне аблации также носят регуляторный характер и направ­лены в большей степени на восстановление целостности тканей и в меньшей - на элиминацию иммунологически чужеродных элементов [38].

Таким образом, в зоне термической аблации присут­ствуют участки коагуляционного некроза, апоптоза, вос­паления, а в более поздние сроки - элементы репарации поврежденных тканей. Всем этим процессам соответству­ют иммунологические механизмы как стимулирующего, так и регуляторного свойства. Остановимся подробней на локальных и системных иммунных эффектах УЗА.

Выделение опухолевых антигенов

Термическая деструкция опухоли приводит к фор­мированию длительно функционирующего источника антигенов для АПК, расположенных в микроокружении опухоли и/или лимфоузлах, дренирующих опухоль. Хотя в литературе обсуждается проблема денатурации белков и потери их иммуногенности [39], на примере метастазов колоректального рака в печени показано, что после абла­ции уровень РЭА повышается, а в дальнейшем происходит его медленное снижение, что может свидетельствовать об иммуногенности антигена и его постепенном выделе­нии из депо [40]. Примечательно, что при хирургическом удалении метастазов падение уровня РЭА наступает уже в ближайшие дни после операции.

Кинетика выделения и время процессирования (под­готовка к презентации) опухолевых антигенов влияют на силу иммунного ответа. Пролонгированная экспозиция постаблативного клеточного дебриса in situ индуцирует более выраженный иммунный эффект, чем стимуляция опухолевым лизатом, приготовленным in vitro, или после соникации опухоли ex vivo [41, 42]. Об этом же свидетель­ствуют сравнительные эксперименты с удалением ново­образования непосредственно после аблации или через два дня после процедуры. При втором варианте развива­ется более выраженный вакцинационный эффект и улуч­шается выживаемость [43].

Выделение аларминов

Алармины, выделяющиеся в процессе ИКС, имеют пре­имущественно иммуностимулирующее влияние на им­мунные клетки. Связываясь с TLR-рецепторами на по­верхности АПК, они индуцируют синтез этими клетками про-воспалительных цитокинов, хемокинов и интерферо- нов 1 -го типа. Наиболее изученными среди аларминов яв­ляются БТШ, которые, попадая во внеклеточное простран­ство, в основном в периаблативной зоне, притягивают и стимулируют АПК [44, 45]. После УЗА клеток колорек­тальной карциномы МС-38 in vitro наступало быстрое выс­вобождение HSP-60 и АТФ [46]. У пациентов с раком про­статы показано повышение экспрессии HSP-27, HSP-72, HSP-73 [45], в то время как при раке молочной железы об­наружена экспрессия HSP-70, причем больше в централь­ных зонах некроза [47]. Высокий постаблационный уро­вень HSP-70 в сыворотке крови ассоциировался с лучшим прогнозом при раке печени, почек или легких [48].

Выделение цитокинов

Опухолевое микроокружение часто содержит высо­кие концентрации IL-10 и TGF-p, которые препятству­ют активации ДК, ограничивают эффекторные функ­ции лимфоцитов и притягивают в очаг Т-регуляторные и супрессорные клетки миелоидного происхождения (MDSC), также подавляющие иммунный ответ. Терми­ческое повреждение ткани меняет баланс этих сигналов, в частности активирует макрофаги, выделяющие воспа­лительные цитокины IL-1, TNF-a, IFN-y [49-52]. После аблации рака простаты отмечено локальное увеличение экспрессии воспалительных ТЫ-цитокинов (IL-2, IFN-y, TNF-a) и снижение противовоспалительных ТЬ2-цитоки- нов (IL-4, IL-5, IL-10) [45].

Инфильтрация, активация и созревание АПК

В эксперименте и клинике получены морфологические и ИГХ-свидетельства обильной инфильтрации периферии зоны соникации активированными АПК. На модели адено­карциномы МС-38 показано, что в течение нескольких ча­сов CD11с+ ДК проникают в опухоль и мигрируют в дре­нирующие лимфоузлы [53, 54]. Аналогичные наблюдения описаны через два дня после КА и РЧА [41, 55], а также у пациентов, страдающих раком простаты [56].

В более поздние сроки (7-14 дней) также наблюдалась инфильтрация периферии аблативной зоны активирован­ными АПК (HLA-DR+), экспрессирующими костимулятор- ные молекулы CD80, CD86 и рецепторы к хемокинам. Эти клетки стимулировали пролиферацию CD4+ Т-лимфоци- тов, секретировали сравнительно больше цитокинов in vitro, при этом ДК выделяли IL-12, а макрофаги - TNF-a [41,53, 57,58].

Опухолевый дебрис стимулировал и созревание ДК [59], а также усиливал эффекторную функцию цитотоксических Т-лимфоцитов, секретирующих TNF-a и IFN-Y [54, 60].

Таким образом, термическая аблация, будучи одним и способов индукции ИКС, создает депо из опухолевых ан­тигенов и аларминов, которые притягивают, активируют, стимулируют созревание и функционирование АПК. Все эти процессы являются важным и необходимым этапом для следующей фазы иммунного цикла - примирования, активации и пролиферации CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов.

Популяции лимфоцитов периферической крови

Данных о постаблативных изменениях субпопуляций лимфоцитов в периферической крови мало. При увеаль­ной меланоме, гепатоцелюлярном раке, остеосаркоме и раке почки аблация приводила к повышению количества CD4+ лимфоцитов и нормализации CD4+/CD8+ иммуно- регуляторного индекса [61,62]. При поздних стадиях рака поджелудочной железы соникация опухоли активировала NK, но мало влияла на CD3+ и CD4+ клетки [63].

В небольшой группе из 16 пациентов со злокачествен­ными новообразованиями УЗА приводила к значитель­ному снижению уровня Т-регуляторных и одновременно цитотоксических Т-лимфоцитов (CTL), а также к менее выраженному снижению CD4+, CD8+ и Т-супрессоров (Ts); в то же время наблюдался рост количества NK-кле- ток [64].

В эксперименте на кроликах, который проводили Wissniowski et al. (2003), получены доказательства специ­фичности Т-лимфоцитов, циркулирующих в перифериче­ской крови после аблации [65].

В целом клиническая роль и прогностическое значение оценки субпопуляций лимфоцитов крови в постаблатив­ном периоде требуют дальнейшего изучения и анализа.

Цитокины и факторы роста в периферической крови УЗА снижает концентрации иммуносупрессивных фак­торов (VEGF, TGF-a и TGF-P) и повышает уровни воспали­тельных цитокинов, однако роль этих изменений в восста­новлении иммунного ответа до конца не установлена [47, 60, 66, 67]. Анализ экспрессии mRNA выявил повышение уровней TGF-ри IL-10 после УЗА [64], что свидетельствует о возможных иммуносупрессивных эффектах процедуры.

Эффекторная фаза иммунного ответа и микроокружение опухоли

Получены экспериментальные свидетельства повы­шения в постаблативном периоде количества и цитоток­сичности антиген-специфических Т-клеток, секреции ими IFN-y и TNF-a, а также развития вакцинационного эффекта [20, 47, 53, 59, 60, 68, 69]. В некоторых работах показано, что эти эффекты ассоциировались с лучшей выживаемо­стью [47, 59, 69, 70].

Противоопухолевый иммунитет после аблации свя­зан в большей степени с клеточным звеном. У «наивных» животных защитным эффектом обладала пересадка лим­фоцитов селезенки от мышей, перенесших термическую аблацию, в то время как введение сыворотки этих живот­ных не влияло на рост перевиваемых опухолей [71 ].

В работе (Silverstrini et al„ 2017) на модели метастати­ческого рака молочной железы показано, что аблация, по­мимо временной регрессии опухоли, ИКС с повышением уровня аларминов (амфотерина), приводила к изменени­ям микроокружения в виде лейкоцитарной инфильтрации, повышения количества CD4+ лимфоцитов, секретирую- щих IFN-y, CD8+ цитотоксических лимфоцитов, а также уменьшения доли Т-регуляторных лимфоцитов. В течение 48 часов после соникации происходило увеличение сосу­дистой проницаемости в опухоли, усиленное дренирова­ние ее белков через лимфатическую систему [20].

В модели трансплантируемой карциномы VX2 показа­но, что через 24 часа периферию зоны аблации инфиль­трировали CD3+ лимфоциты и эти клетки обнаруживались в центре очага через две недели после процедуры [65].

У пациенток, страдающих раком молочной желе­зы, в сроки от 7 до 14 дней после УЗА по данным ИГХ выявлена выраженная перифокальная инфильтрация CD3+, CD4+, CD8+ лимфоцитами, В-лимфоцитами и NK, при этом были активны эффекторные механизмы, связан­ные с FAS-L, гранзимом и перфорином [72].

В гепатоцеллюлярном раке и метастазах в печени после аблации отмечена инфильтрация опухоли Т-лимфо- цитами, NK и макрофагами [73]. Продукция CD4+ и CD8+ лимфоцитами IFN-y возрастала, при этом цитотокси­ческие клетки обладали повышенными эффекторными функциями и специфичностью по отношению к опухоли, но не к нормальным тканям [74, 75].

Также при метастатических опухолях печени описана миграция в аблативную зону «наивных» CD62L+ клеток и Т-лимфоцитов памяти, которые синтезировали IFN-y в ответ на стимуляцию опухоль-ассоциированным антиге­ном MUC1 [52].

В ответ на усиленную инфильтрацию CD8+ и CD4+ лимфоцитами у пациентов с метастазами колоректально­го рака в печени отмечена повышенная экспрессия опухо­левыми клетками PD-1L, что придавало микроокружению характеристики асептического воспаления [19].

В отношении неспецифических эффектов известно, что через четыре недели после аблации гепатоцеллюляр- ного рака повышение цитотоксической активности NK и продукция IFN-y ассоциировались с лучшей выживаемо­стью [76].

Роль антиген-специфических антител в противоопухоле­вом иммунитете менее понятна [52, 71], хотя описаны слу­чаи их выявления в отдаленные сроки после аблации [77].

Все эти данные говорят о том, что термическая аблация вызывает главным образом специфический клеточный от­вет к антигенам опухоли. Прогностическая роль иммунных ответов в этом контексте до конца не установлена [74, 78].

Абскопальные эффекты после аблации в режиме монотерапии

Помимо локальных иммунных эффектов, большой практический интерес представляют постаблативные из­менения опухолевого микроокружения в отдаленных ме­тастазах. В моделях колоректального рака и меланомы по­лучены доказательства быстрого иммунного ответа в виде усиленной клеточной инфильтрации дистального очага, появления признаков воспаления, однако со временем опу­холь начинала экспрессировать PD-L1, истощая тем самым иммунные клетки и подавляя иммунный ответ [19]. Поэто­му клинически АЭ были слабо выраженными, непродолжи­тельными и не позволяли контролировать заболевание.

По аналогии у пациентов с метастатическим гепатоцел- люлярным раком наблюдалась усиленная инфильтрация необработанной опухоли Т-лимфоцитами, NK и макро­фагами, хотя и в меньшей степени, чем в очаге аблации. Кроме этого, продемонстрирована связь между степенью инфильтрации и прогнозом. [73].

Основываясь на экспериментальных и клинических на­блюдениях, большинство исследователей пришло к выводу, что иммунных эффектов УЗА недостаточно для длительно­го контроля генерализованных форм рака, поэтому в по­следние годы акцент сделан на комбинированных подходах.

Аблация опухоли в комбинации с иммунотерапией

В контексте современных лечебных парадигм пост­аблативные иммунные эффекты интересны с нескольких позиций. Во-первых, циторедукция создает предпосылки для более успешного проведения иммунотерапии, кото­рая, как правило, более эффективна при минимальных проявлениях заболевания. Во-вторых, ИКС способствует генерации CD4+ и антиген-специфичных цитотоксических CD8+ Т-лимфоцитов, индукции воспалительного микро­окружения, в том числе экспрессии PD-1L как в зоне сони- кации, так и в отдаленных метастазах. Это создает более благоприятные условия для блокады каскада PD-1 /PD-1L [19, 79-81]. В-третьих, в случае прогрессирования на фо­не проводимой иммунотерапии ИКТ аблация и ИКС могут стать дополнительным источником антигенного матери­ала для запуска нового иммунного цикла и расширения клонального репертуара эффекторных клеток [82, 83]. 

В-четвертых, синергизм аблации и иммунотерапии в пер­спективе может привести к снижению доз ИКТ, что важно при их совместном применении, когда существенно воз­растает частота нежелательных явлений [84, 85].

Наиболее часто применяемой и активно изучаемой аблативной методикой остается стереотаксическая ги- пофракционированная лучевая терапия, о чем свидетель­ствуют текущие протоколы, зарегистрированные на сай­те ClinicalTrials.gov. В частности, речь идет о сочетании лучевой аблации с ингибиторами CTLA-4 или PD-1/PD-1L (протоколы NCT02843165, NCT03110978, NCT03399552, NCT02239900, NCT03050060, NCT03050554, NCT02648282, NCT02608385), а также с их комбинацией (NCT03122496, NCT03203304).

Большое внимание приковано и к альтернативным ме­тодикам аблации, не связанным с ионизирующим излуче­нием, поскольку последнее обладает повышенной мест­ной токсичностью на фоне терапии ИКТ [86].

Аблация опухоли в комбинации с иммунотерапией ока­залась более эффективной в подавлении роста отдален­ных метастазов колоректального рака СТ 26 и меланомы В16 в экспериментальных моделях, чем каждый из мето­дов по отдельности [19]. Авторы связали наступившие АЭ с усиленной инфильтрацией дистальной опухоли CD8+ и CD4+ лимфоцитами, секретирующими INF-y и TNF-a, снижением в микроокружении доли Т-регуляторных лимфоцитов в пользу эффекторных CD8+ клеток, а также успешным подавлением каскада PD-1 /PD-1L.

В экспериментальной модели рака почки, где исполь­зован аналогичный метод иммунотерапии, продемон­стрирован синергизм с РЧА, что выражалось в улучшении локального контроля, индукции АЭ, сохранении иммуно­логической памяти и увеличении выживаемости [87]. Эта комбинация также вызывала более выраженный систем­ный цитокиновый ответ в виде повышения уровней IFN-y, TNF-a, IL-2, IL- 4 и IL-5.

В качестве примера современного подхода к иммуно­терапии можно привести программу лечения эксперимен­тальной гепатомы с использованием тройной комбинации: термической аблации (MBA), GM-CSF для стимуляции ДК и блокады CTLA-4 [88]. Сочетание этих методов обладало наиболее выраженным защитным эффектом при реим­плантации опухоли, приводило к АЭ у 50% животных и ас­социировалось с лучшей выживаемостью.

Интересные и важные для будущих исследований дан­ные описаны в экспериментальной модели билатерального рака молочной железы, в которой оценивалась УЗА в соче­тании с комбинированной иммунотерапией (агонист TLR в качестве стимулятора AFIK и ингибитор PD -1 /PD -1L) [20]. Иммунотерапия с последующей соникацией одного очага вызывала быстрый локальный и абскопальный эффект в виде выраженной инфильтрации опухоли CD3+, CD4+ и CD8+ лимфоцитами, продуцирующими IFN-y, снижения количества макрофагов и супрессорных клеток миелоид- ного происхождения, повышения в дистальной опухоли ко­личества Ml макрофагов (с противоопухолевой поляриза­цией). 

Клинически это сопровождалось полной регрессией первичной и отдаленной опухоли в 80% случаев. Авторами отмечен синергизм аблации с иммунотерапией, что может стать предпосылкой для снижения доз ИКТ с целью умень­шения частоты нежелательных явлений. Наиболее наглядно роль УЗА в этой серии экспериментов продемонстрирована на модели с множественными опухолями, когда последова­тельная аблация двух очагов в сочетании с иммунотерапи­ей показала преимущества перед одной иммунотерапией. За счет циторедуктивного и абскопального эффектов уда­лось достичь регрессии отдаленных очагов в 60% случаев по сравнению с 25% в группе, где проводилась только им­мунотерапия. Эти результаты могут стать эксперименталь­ной основной для разработки протоколов, предусматрива­ющих полифокальные аблации на этапах лечения с целью циторедукции и иммуностимуляции, что может привести к увеличению частоты АЭ.

Доклинические исследования нашли свое продолжение в текущих протоколах, в которых при метастатическом колоректальном раке термическую аблацию одного узла сочетают с блокадой CTLA-4 и PD-1/PD-1L (протоколы NCT03122509, NCT03101475). При гепатоцеллюлярном раке изучается комбинация MBA (NCT03122509) или РЧА (NCT03124498) с адоптивной иммунотерапией.

Заключение


Открытия последних десятилетий и очевидные кли­нические успехи дали новый импульс развитию иммуно­терапии рака. Результаты изучения механизмов взаимо­действия опухоли и иммунной системы позволили лучше понять причины ограниченной эффективности существу­ющих подходов, а также обозначить направления будущих научно-прикладных исследований.

Дальнейший прогресс в лечении диссеминированных форм рака во многом связывают с подходами разнона­правленного воздействия на фазы иммунного цикла [89, 90], а также с использованием иммунотерапии в комби­нации с традиционными методами противоопухолевого
лечения. Арсенал имеющихся способов влияния на им­мунную систему сегодня достаточно широк, он продолжа­ет пополняться новыми технологиями, что вселяет опти­мизм в отношении успешного развития этого направления.

В данном обзоре акцент был сделан на ультразвуковой аблации опухоли как способе циторедукции, снижения системной иммуносупрессии, достижения ИКС, индукции АЭ, а также на возможности интеграции этих эффектов в современные программы иммунотерапии генерализо­ванного рака.

Создание с помощью аблативных методик депо кле­точного дебриса in situ обладает рядом преимуществ перед традиционными методами вакцинирования, в частности за счет более широкого спектра опухоле­вых антигенов, цитокинов, стимуляторов АПК, а также пролонгированного контакта этих факторов с иммунной системой. Среди существующих способов индукции ИКС УЗА занимает особую нишу, поскольку обладает рядом преимуществ: получение быстрого клинического и им­мунного эффекта, неинвазивность и низкая локальная токсичность, возможность многократного применения, относительная дешевизна, отсутствие необходимости длительной госпитализации. Современные установки для проведения УЗА позволяют манипулировать физи­ческими параметрами воздействия на опухоль. Тем са­мым в режиме реального времени под ультразвуковой или MPT-навигацией можно вызывать структурные изме­нения тканей, необходимые для достижения тех или иных биологических/иммунных эффектов. Методологические подходы к режимам соникации в конкретных клиниче­ских ситуациях находятся на ранних стадиях разработки.

Следует отметить ряд аспектов, которые продолжают обсуждаться среди специалистов, в частности дискус­сию об иммуногенности разных видов клеточной смерти в процессе аблации. Как отмечалось выше, апоптотиче- скую смерть традиционно принято считать иммуносу- прессивной, в то же время некоторыми авторами выска­зывается мнение, что апоптоз, в зависимости от уровней выделяемых аларминов, также может индуцировать про­тивоопухолевый иммунный ответ [91-93]. Эта проблема требует дальнейшего изучения.

Кроме этого, обсуждается иммуногенность клеточ­ного дебриса с учетом вероятности денатурации белков. В этом контексте предлагаются новые подходы к режиму соникации, направленные на сохранение целостности вну­триклеточных антигенов [29, 94].

Таким образом, можно констатировать, что термиче­ская аблация вызывает циторедуктивный эффект и сни­жение уровня иммуносупрессивных сигналов. В организ­
ме создается очаг асептического воспаления в виде депо in situ, содержащего опухолевые антигены (неоантигены), алармины и воспалительные цитокины, что в целом харак­теризует этот процесс как ИКС. Наряду с иммуностимули­рующим влиянием аблации на врожденный и адаптивный иммунитет существует вероятность появления регулятор­ных сигналов, особенно на фоне репаративных процессов. От баланса всех этих механизмов во многом зависит, на­сколько выраженным будет иммунный и клинический от­вет. Данные аспекты требуют дальнейшего качественного и количественного анализа.

УЗА способствует более успешному прохождению на­чальных фаз иммунного цикла и подготовке иммунной системы к примированию и генерации популяции CD4+ и специфических CD8+ эффекторных Т-клеток.

Важными и интересными с точки зрения клиники явля­ются локальные и отдаленные иммунные эффекты, которые способна индуцировать УЗА. Среди них - инфильтрация зоны соникации и отдаленных метастазов активированными иммунными клетками, индукция воспалительного фенотипа, снижение количества иммуносупрессивных клеток и сигна­лов на уровне микроокружения. В ответ на абскопальные иммунные эффекты в короткие сроки опухоль активирует защитные механизмы, в частности экспрессию PD-1L, исто­щающей эффекторные Т-лимфоциты. Поэтому в свете со­временных взглядов УЗА рассматривается преимуществен­но как один из элементов разнонаправленного воздействия на фазы иммунного цикла. 

Экспериментально показано, что аблация в комбинации с активацией АПК и блокадой им­муносупрессивных механизмов за счет ИКТ позволили по­высить частоту АЭ и увеличить выживаемость. Эти результа­ты послужили импульсом и научной основой для разработки и активации ряда клинических исследований, направленных не только на проверку самой концепции, но и на уточнение ряда методологических проблем. В частности, речь идет об определении оптимальной последовательности эта­пов комбинированного лечения, временных интервалов для каждого из них, установлении наиболее информативных методов мониторинга иммунной системы и визуализации опухоли [20, 95]. Не менее актуальным остается выявление предиктивных и прогностических критериев, разработка ин­дивидуализированных программ лечения, адаптированных к характеристикам пациента, клиническим проявлениям за­болевания и показателям иммунитета [4,90,96].

Таким образом, проводимые сейчас за рубежом, а так­же планируемые в РФ исследования должны уже в бли­жайшие годы показать, насколько эффективной окажется интеграция УЗА (HIFU) в современные программы комби­нированного лечения диссеминированного рака.

Информация об авторах:

Геннадий Н. Мачак, д. м. н., ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени Н. Н. Приорова» Министерства здравоохранения РФ

Литература

1.        Joshi S.S., Maron S.B., Catenacci D.V. Pembrolizumab for treatment of advanced gastric and gastroesophageal junction adenocarcinoma. Future Oncol. 2018. Vol. 14 (5). P. 417-430. doi: 10.2217/fon-2017-0436.

2.        Peters S., Kerr К. M., Stahel R. PD-1 blockade in advanced NSCLC: A focus on pembrolizumab. Cancer Treat. Rev. 2018. Vol. 62.
P. 39-49. doi: 10.1016/j. ctrv.2017.10.002.

3.        Schachter J., Ribas A., Long G.V., Arance A., Grab J. J., Mortier L. et al. Pembrolizumab versus ipilimumab for advanced melanoma: final overall survival results of a multicentre, randomised, open-label phase 3 study (KEYNOTE-006). Lancet. 2017. Vol. 390 (10105). P. 1853-1862. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31601-X.
4.        Chen D.S., Mellman I. Elements of cancer immunity and the cancer-immune set point. Nature. 2017. Vol. 541 (7637). P. 321-330. doi: 10.1038/nature21349.

5.        Alatrash G., Daver N., Mittendorf E. A. Targeting Immune Checkpoints in Hematologic Malignancies. Pharmacol. Rev. 2016. Vol. 68 (4). P. 1014-1025.

6.        Atkins M. B., Larkin J. Immunotherapy Combined or Sequenced With Targeted Therapy in the Treatment of Solid Tumors: Current Perspectives. J. Natl. Cancer Inst. 2016. Vol. 108 (6). djv414. doi: 10.1093/jnci/djv414.

7.        Motzer R. J., Tannir N. М., McDermott D. F., Aren Frontera 0., Melichar B., Choueiri T. K. et al. Nivolumab plus Ipilimumab versus Sunitinib in Advanced Renal-Cell Carcinoma. N. Engl.J. Med. 2018. Vol. 378 (14). P. 1277-1290.

8.        Powles T., Eder J. P., Fine G.D., Braiteh F. S., Loriot Y., Cruz C. et al. MPDL3280A (anti - PD-L1) treatment leads to clinical activity in metastatic bladder cancer. Nature. 2014. Vol. 515. P. 558-562.

9.        Topalian S. L., Flodi F. S., Brahmer J. R., Gettinger S. N., Smith D. C., McDermott D. F. et al. Safety, activity, and immune correlates of anti - PD-1 antibody in cancer. N. Engl.J. Med. 2012. Vol. 366. P. 2443-2454.

10.        Topalian S.L., Sznol M., McDermott D. F., Kluger FI. M., Carvajal R.D., Sharfman W. FI. et al. Survival, durable tumor remission, and long-term safety in patients with advanced melanoma receiving nivolumab. J. Clin. Oncol. 2014. Vol. 32. P. 1020-1030.

11.        Sharma P., Allison J.P. The future of immune checkpoint therapy. Science. 2015. Vol. 348 (6230). P. 56-61. doi: 10.1126/science. aaa8172

12.        Ventola C. L. Cancer Immunotherapy, Part 3: Challenges and Future Trends. P&T. 2017. Vol. 42 (8). P. 514-521.

13.        Koyama S., Akbay E. A., Li Y. Y. et al. Adaptive resistance to therapeutic PD-1 blockade is associated with upregulation of alternative immune checkpoints. Nat. Commun. 2016. Vol. 7. P. 10501.

14.        Mothersill C., Rusin A., Fernandez-Palomo C., Seymour C. Flistory of bystander effects research 1905-present; what is in a name? Int.J. Radial Biol. 2017. Vol. 29. P. 1-12. doi: 10.1080/09553002.2017.1398436.

15.        Siva S., MacManus M. P., Martin R. F., Martin O.A. Abscopal effects of radiation therapy: a clinical review for the radiobiologist. Cancer Lett. 2015. Vol. 356 (1). P. 82-90. doi: 10.1016/j. canlet. 2013.09.018. Epub 2013 Oct 12.

16.        Grass G. D., Krishna N., Kim S. The immune mechanisms of abscopal effect in radiation therapy. Curr. Probl. Cancer. 2016. Vol. 40 (1). P. 10-24. doi: 10.1016/j. currproblcancer. 2015.10.003. Epub 2015 Nov 21.

17.        Levy A., Chargari C., Marabelle A., Perfettini J.L., Magne N., Deutsch E. Can immunostimulatory agents enhance the abscopal effect ofradiotherapy? Eur.J. Cancer. 2016. Vol. 62. P. 36-45. doi: 10.1016/j. ejca. 2016.03.067. Epub 2016 May 18.

18.        Postow M.A., Callahan M. K., Barker C.A., Yamada Y., Yuan J., Kitano S. et al. Immunologic correlates of the abscopal effect in a patient with melanoma. N. Engl.J. Med. 2012. Vol. 366 (10). P. 925-931. doi:10.1056/NEJMoa1112824.

19.        Shi L., Chen L., Wu C., Zhu Y., Xu B., Zheng X. et al. PD-1 blockade boosts radiofrequency ablation-elicited adaptive immuneresponses against tumor. Clin. Cancer Res. 2016. Vol. 22. P. 1173-1184.

20.        Silvestrini M. T., Ingham E. S., Mahakian L. M., Kheirolomoom A., Liu Y., Fite B. Z. et al. Priming is key to effective incorporation of image-guided thermal ablation into immunotherapy protocols. JCI Insight. 2017. Vol. 2 (6). e90521.

21.        Pampena M. B., Barrio M. M., Julia E. P., Blanco P. A., von Euw E. M., Mordoh J. et al. Early Events of the Reaction Elicited by CSF-470 Melanoma Vaccine Plus Adjuvants: An In Vitro Analysis of Immune Recruitment and Cytokine Release. Front Immunol. 2017. Vol. 8. P. 1342. doi: 10.3389/fimmu.2017.01342.

22.        Silva A., Mount A., Krstevska K., Pejoski D., Flardy M. P., Owczarek C. et al. The combination of ISCOMATRIX adjuvant and TLR agonists induces regression of established solid tumors in vivo. J. Immunol. 2015. Vol. 194 (5). P. 2199-2207.

23.        Kushner B. FI., Cheung I. Y., Modak S., Kramer K., Ragupathi G., Cheung N. K. Phase I trial of a bivalent gangliosides vaccine in combination with p-glucan for high-risk neuroblastoma in second or later remission. Clin. Cancer Res. 2014. Vol. 20 (5). P. 1375— 1382. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-1012.

24.        Adams S. Toll-like receptor agonists in cancer therapy. Immunotherapy. 2009. Vol. 1 (6). P. 949-964. doi: 10.2217/imt.09.70.

25.        Liu C., Xie Y., Sun B., Geng F., Zhang F., Guo Q. et al. MUC1- and Survivin-based DNA Vaccine Combining Immunoadjuvants CpG and interleukin-2 in a Bicistronic Expression Plasmid Generates Specific Immune Responses and Antitumour Effects in a Murine Colorectal Carcinoma Model. Scand. J. Immunol. 2018. Vol. 87 (2). P. 63-72. doi: 10.1111/sji.12633.

26.        Shukla N. M., Arimoto К. I., Yao S., Fan J. B., Zhang Y., Sato-Kaneko F. et al. Identification of Compounds That Prolong Type I Interferon Signaling as Potential Vaccine Adjuvants. SLAS Discov. 2018. May 11. 2472555218774308.

27.        Rammensee FI. G., Singh-Jasuja FI. FILA ligandome tumor antigen discovery for personalized vaccine approach. Expert Rev. Vaccines. 2013. Vol. 12. P. 1211-1217. doi: 10.1586/14760584.2013.836911.

28.        Kooreman N. G., Kim Y., de Almeida P. E., Termglinchan V., Diecke S., Shao N. Y. et al. Autologous iPSC-Based Vaccines Elicit Anti­tumor Responses In Vivo. Cell Stem. Cell. 2018. Vol. 22 (4). P. 501-513. e7 doi: 10.1016/j. stem. 2018.01.016. Epub 2018 Feb 15.

29.        Bull J. M. C. A review of immune therapy in cancer and a question: can thermal therapy increase tumor response?
Int.J. Hyperthermia. 2017. Vol. 3. P. 1-13. doi: 10.1080/02656736.2017.1387938.

30.        Mauri G., Nicosia L., Xu Z., Di Pietro S., Monfardini L., Bonomo G. et al. Focused ultrasound: tumour ablation and its potential to enhance immunological therapy to cancer. Br.J. Radiol. 2018. Vol. 91 (1083). 20170641. doi: 10.1259/bjr.20170641.

31.        Wu F. High Intensity Focused Ultrasound (HIFU) Ablation. In: Keisari Y. (eds). Tumor Ablation. The Tumor Microenvironment. Springer Science+Business Media Dordrecht, 2013. Vol 5. P. 61-76. doi: 10.1007/978-94-007-4694-7_2.

32.        Tranberg K. G. Percutaneous ablation of liver tumours. Best Pract. Res. Clin. Gastroenterol. 2004. Vol. 18. P. 125-145.

33.        Ohno T., Kawano K., Sasaki A. et al. Expansion of an ablated site and induction of apoptosis after microwave coagulation therapy in rat liver. J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 2001. Vol. 8. P. 360-366.

34.        Canney M.S., Khokhlova V. A., Bessonova O.V., Bailey M. R., Crum L.A. Shock-induced heating and millisecond boiling in gels and tissue due to high intensity focused ultrasound. Ultrasound Med. Biol. 2010. Vol. 36. P. 250-267.

35.        Maxwell A. D., Wang T.Y., Cain C. A., Fowlkes J. B., Sapozhnikov O.A., Bailey M. R., Xu Z. Cavitation clouds created by shock scattering from bubbles during histotripsy. J.Acoust. Soc.Am. 2011. Vol. 130. P. 1888-1898.

36.        Waitz R., Solomon S. B., Petre E. N., Trumble A. E., Fasso M., Norton L. et al. Potent induction of tumor immunity by combining tumor cryoablation with anti-CTLA-4 therapy. Cancer Res. 2012. Vol. 72 (2). P. 430-439.

37.        Davidovich P., Kearney C. J., Martin S. J. Inflammatory outcomes of apoptosis, necrosis and necroptosis. Biol. Chem. 2014. Vol. 395 (10). P. 1163-1171.

38.        Julier Z., Park A. J., Briquez P. S., Martino M.M. Promoting tissue regeneration by modulating the immune system. Acta Biomater. 2017. Vol. 53. P. 13-28. doi:10.1016/j.actbio.2017.01.056.

39.        Wu F., Zhou L., Chen W. R. Host antitumour immune responses to HIFU ablation. Int.J. Hyperthermia. 2007. Vol. 23. P. 165-171

40.        Ghanamah M., Berber E., Siperstein A. Pattern of carcinoembryonic antigen drop after laparoscopic radiofrequency ablation of liver metastasis from colorectal carcinoma. Cancer. 2006. Vol. 107. P. 149-153.

41.        den Brok M.H. M. G. M., Sutmuller R. P. M, Nierkens S., Bennink E. J., Frielink C., Toonen L.W. J. Efficient loading of dendritic cells following cryo and radiofrequency ablation in combination with immune modulation induces anti-tumour immunity. Br.J. Cancer. 2006. Vol. 95. P. 896-905.

42.        Ito F., Ku A. W., Bucsek M. J., Muhitch J. B., Vardam-Kaur T., Kim M. et al. Immune adjuvant activity of pre-resectional radiofrequency ablation protects against local and systemic recurrence in aggressive murine colorectal cancer. PLoS One. 2015. Vol. 10. e0143370. doi:10.1371/journal.pone.0143370.

43.        Xing Y., Lu X., Pua EC., Zhong P. The effect of high intensity focused ultrasound treatment on metastases in a murine melanoma model. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2008. Vol. 375 (4). P. 645-650. doi: 10.1016/j.bbrc. 2008.08.072.

44.        Chu K. F., Dupuy D.E. Thermal ablation of tumours: biological mechanisms and advances in therapy. Nat. Rev. Cancer. 2014. Vol. 14 (3). P. 199-208.

45.        Kramer G., Steiner G. E., Grobl M., Hrachowitz K., Reithmayr F., Paucz L. et al. Response to sublethal heat treatment of prostatic tumor cells and of prostatic tumor infiltrating T-cells. Prostate. 2004. Vol. 58 (2). P. 109-120.

46.        Hu Z., Yang X. Y., Liu Y., Morse M.A., Lyerly H. K., Clay T. M., Zhong P. Release of endogenous danger signals from HIFU-treated tumor cells and their stimulatory effects on APCs. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2005. Vol. 335. P. 124-131 DOI: 10.1016/j. bbrc. 2005.07.071.

47.        Wu F., Wang Z. B., Cao Y. D., Zhou Q., Zhang Y., Xu Z. L., Zhu X. Q. Expression of tumor antigens and heat-shock protein 70 in breast cancer cells after high-intensity focused ultrasound ablation. Ann. Surg. Oncol. 2007. Vol. 14. P. 1237-1242. doi:10.1245/sl 0434-006-9275-6.

48.        Haen S. P., Gouttefangeas C., Schmidt D., Boss A., Clasen S., von Herbay A. et al. Elevated serum levels of heat shock protein 70 can be detected after radiofrequency ablation. Cell Stress Chaperones. 2011. Vol. 16 (5). P. 495-504.

49.        Evrard S., Menetrier-Caux C., Biota C., Neaud V., Mathoulin-Pelissier S., Blay J.Y., Rosenbaum J. Cytokines pattern after surgical radiofrequency ablation of liver colorectal metastases. Gastroenterol. Clin. Biol. 2007. Vol. 31. P. 141-145.

50.        Hori K., Mihich E., Ehrke M.J. Role of tumor necrosis factor and interleukin 1 in gammainterferon-promoted activation of mouse tumoricidal macrophages. Cancer Res. 1989. Vol. 49. P. 2606-2614.

51.        Kirn A., Bingen A., Steffan A.M., Wild M.T., Keller F., Cinqualbre J. Endocytic capacities of Kupffer cells isolated from the human adult liver. Hepatology.Ш2. Vol. 2. P. 216-222.

52.        Napoletano C., Taurino F., Biffoni M., De Majo A., Coscarella G., Bellati F. et al. A RFA strongly modulates the immune system and anti-tumor immune responses in metastatic liver patients. Int. J. Oncol. 2008. Vol. 32. P. 481-490.

53.        Hu Z., Yang X.Y., Liu Y., Sankin G.N., Риа E.C., Morse M.A. et al. Investigation of HIFU-induced anti-tumor immunity in a murine tumor model. J. Transl. Med. 2007. Vol. 5. P. 34. doi:10.1186/1479-5876-5-34.

54.        Xing Y., Lu X., Риа E.C., Zhong P. The effect of high intensity focused ultrasound treatment on metastases in a murine melanoma model. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2008. Vol. 375(4). P. 645-650. doi: 10.1016/j.bbrc.2008.08.072.

55.        Dromi S.A., Walsh M.P., Herby S., Traughber B., Xie J., Sharma K.V. et al. Radiofrequency ablation induces antigen-presenting cell infiltration and amplification of weak tumor-induced immunity. Radiology. 2009. Vol. 251(1). P. 58-66.

56.        Huang X., Yuan F., Liang M., Lo H.W., Shinohara M.L., Robertson C., Zhong P. M-HIFU inhibits tumor growth, suppresses STAT3 activity and enhances tumor specific immunity in a transplant tumor model of prostate cancer. PLoS ONE. 2012. Vol. 7. e41632.

57.        Xu Z.L., Zhu X.Q., Lu P., Zhou Q., Zhang J., Wu F. Activation of tumor-infiltrating antigen presenting cells by high intensity focused ultrasound ablation of human breast cancer. Ultrasound Med. Biol. 2009. Vol. 35. P. 50-57.

58.        Zerbini A., Pilli M., Fagnoni F., Pelosi G., Pizzi M.G., Schivazappa S. et al. Increased immunostimulatory activity conferred to antigen-presenting cells by exposure to antigen extract from hepatocellular carcinoma afterradiofrequency thermal ablation. J. Immunother. 2008. Vol. 31(3). P. 271-282. doi: 10.1097/CJI.0b013e318160ff1 c.

59.        Zhang Y., Deng J., Feng J., Wu F. Enhancement of antitumor vaccine in ablated hepatocellular carcinoma by high-intensity focused ultrasound: a preliminary report. World J. Gastroenterol. 2010. Vol. 16. P. 3584-3591.

60.        Deng J., ZhangY., Feng J., Wu F. Dendritic cells loaded with ultrasound-ablated tumour induce in vivo specific antitumour immune responses. Ultrasound Med. Biol. 2010. Vol. 36. P. 441-448.

61.        Rosberger D.F., Coleman D.J., Silverman R., Woods S., Rondeau M., Cunningham-Rundles S.. Immunomodulation in choroidal melanoma: Reversal of inverted CD4/CD8 ratios following treatment with ultrasonic hyperthermia. Biotechnol. Ther. 1994. Vol. 5. P. 59-68.

62.        Wu F., Wang Z.B., Lu P., Xu Z.L., Chen W.Z., Zhu H., Jin C.B. Activated anti-tumor immunity in cancer patients after high intensity focused ultrasound ablation. Ultrasound Med. Biol. 2004. Vol. 30. P. 1217-1222.

63.        Wang X., Sun J.. High-intensity focused ultrasound in patients with late-stage pancreatic carcinoma. Chin. Med. J. (Engl.). 2002.

64.        Yang W., Wang W., Liu B., Zhu B., Li J., Xu D. et al. Immunomodulation characteristics by thermal ablation therapy in cancer patients. Asia Рас. J. Clin. Oncol. 2018. Jan 8. doi: 10.1111/ajco. 12836.

65.        Wissniowski T.T., Hansler J., Neureiter D., Frieser M., Schaber S., Esslinger B. et al. Activation of tumor-specific T lymphocytes by radio-frequency ablation of the VX2 hepatoma in rabbits. Cancer Res. 2003. Vol. 63(19). P. 6496-500.

66.        van den Bijgaart R.J., Eikelenboom D.C., Hoogenboom M., Futterer J.J., den Brok M.H., Adema G.J. Thermal and mechanical high-intensity focused ultrasound: perspectives on tumor ablation, immune effects and combination strategies. Cancer Immunol. Immunother. 2017. Vol. 66(2). P. 247-258. doi: 10.1007/s00262-016-1891 -9.

67.        Zhou Q., Zhu X.Q., Zhang J., Xu J.L., Lu P., Wu F. Changes in circulating immunosuppressive cytokine levels of cancer patients after high intensity focused ultrasound treatment. Ultrasound Med. Biol. 2008. Vol. 34. P. 81-87.

68.        Xia J.Z., Xie F.L., Ran L.F., Xie X.P., Fan Y.M., Wu F. High-intensity focused ultrasound tumor ablation activates autologous tumor-specific cytotoxic T lymphocytes. Ultrasound Med. Biol. 2012. Vol. 38(8). P. 1363-1371. 10.1016/j. ultrasmedbio.2012.03.009.
69.        Yang R., Reilly C.R., Rescorla F.J., Sanghvi N.T., Fry F.J., Franklin T.D. Jr, Grosfeld J.L. Effects of high-intensity focused ultrasound in the treatment of experimental neuroblastoma. J. Pediatr. Surg. 1992. Vol. 27. P. 246-250.

70.        Ran L.F., Xie X.P., Xia J.Z., Xie F.L., Fan Y.M., Wu F. Specific antitumour immunity of HIFU-activated cytotoxic T lymphocytes after adoptive transfusion in tumour-bearing mice. Int. J. Hyperthermia. 2016. Vol. 32(2). P. 204-210.

71.        den Brok M.H., Sutmuller R.P., van derVoort R., Bennink E.J., Figdor C.G., Ruers T.J., Adema G.J. In situ tumor ablation creates an antigen source for the generation of antitumor immunity. Cancer Res. 2004. Vol. 64(11). P. 4024-4029.

72.        Lu P., Zhu X.Q., Xu Z.L., Zhou Q., Zhang J., Wu F. Increased infiltration of activated tumor-infiltrating lymphocytes after high intensity focused ultrasound ablation of human breast cancer. Surgery. 2009. Vol. 145. P. 286-293.

73.        Dong B.W., Zhang J., Liang P., Yu X.L., Su L., Yu D.J. et al. Sequential pathological and immunologic analysis of percutaneousmicrowave coagulation therapy of hepatocellular carcinoma. Int. J. Hyperthermia. 2003. Vol. 19(2). P. 119-133.

74.        Zerbini A., Pilli M., Penna A., Pelosi G., Schianchi C., Molinari A. et al. Radiofrequency thermal ablation of hepatocellular carcinoma liver nodules can activate and enhance tumor-specific T-cell responses. Cancer Res. 2006. Vol. 66(2). P. 1139-1146.

75.        Hansler J., Wissniowski T.T., Schuppan D., Witte A., Bernatik T., Hahn E.G., Strobel D. Activation and dramatically increased cytolytic activity of tumor specific T lymphocytes after radio-frequency ablation in patients with hepatocellular carcinoma and colorectal liver metastases. World J. Gastroenterol. 2006. Vol. 12(23). P. 3716-3721.

76.        Zerbini A., Pilli M., Laccabue D., Pelosi G., Molinari A., Negri E. et al. Radiofrequency thermal ablation for hepatocellular carcinoma stimulates autologous NK-cell response. Gastroenterology. 2010. Vol. 138(5). P. 1931-1942. doi: 10.1053/j.gastro.2009.12.051.

77.        Widenmeyer M., Shebzukhov Y., Haen S.P., Schmidt D., Clasen S., Boss A. et al. Analysis of tumor antigen-specific T cells and antibodies in cancer patients treated with radiofrequency ablation. Int. J. Cancer. 2011. Vol. 128(11). P. 2653-2662. doi: 10.1002/ijc.25601.

78.        Hiroishi K., Eguchi J., Baba T., Shimazaki T., Ishii S., Hiraide A. et al. Strong CD8(+) T-cell responses against tumor-associated antigens prolong the recurrence-free interval after tumor treatment in patients withhepatocellular carcinoma. J. Gastroenterol. 2010. Vol. 45(4). P. 451-458. doi: 10.1007/s00535-009-0155-2.

79.        Herbst R.S., Soria J.C., Kowanetz M., Fine G.D., Hamid O., Gordon M.S. et al. Predictive correlates of response to the anti-PD-L1 antibody MPDL3280A in cancer patients. Nature. 2014. Vol. 515. P. 563-567.

80.        Taube J.M., Klein A., Brahmer J.R., Xu H., Pan X., Kim J.H. et al. Association of PD-1, PD-1 ligands, and other features of the tumor immune microenvironment with response to anti-PD-1 therapy. Clin. Cancer Res. 2014. Vol. 20. P. 5064-5074.

81.        Tumeh P.C., Harview C.L., Yearley J.H., Shintaku I.P., Taylor E.J., Robert L. et al. PD-1 blockade induces responses by inhibiting adaptive immune resistance. Nature. 2014. Vol. 515. P. 568-571.

82.        Diab A., McArthur H.L., Solomon S.B., Sacchini V., Comstock C., Maybody M. et al. A pilot study of preoperative (Pre-op), single­dose ipilimumab (Ipi) and/or cryoablation (Cryo) in women (pts) with early-stage/resectable breast cancer (ESBC). ASCO Meeting Abstracts. 2014. Vol. 32. P. 1098.

83.        Page D.B., Yuan J., Redmond D., Wen Y.H., Durack J.C., Emerson R. et al. Deep Sequencing of T-cell Receptor DNA as a Biomarker of Clonally Expanded TILs in Breast Cancer after Immunotherapy. Cancer Immunol. Res. 2016. Vol. 4(10). P. 835-844.

84.        Hodi F.S., Chesney J., Pavlick A.C., Robert C., Grossmann K.F., McDermott D.F. et al. Combined nivolumab and ipilimumab versus ipilimumab alone in patients with advanced melanoma: 2-year overall survival outcomes in a multicentre, randomised, controlled, phase 2 trial. Lancet Oncol. 2016. Vol. 17(11). P. 1558-1568. doi: 10.1016/S1470-2045(16)30366-7.

85.        Sznol M., Ferrucci P.F., Hogg D., Atkins M.B., Wolter P., Guidoboni M. et al. Pooled Analysis Safety Profile of Nivolumab and Ipilimumab Combination Therapy in Patients With Advanced Melanoma. J. Clin. Oncol. 2017. Vol. 35(34). P. 3815-3822. doi: 10.1200/JCO.2016.72.1167.

86.        Sibaud V., David I., Lamant L., Resseguier S., Radut R., Attal J. et al. Acute skin reaction suggestive of pembrolizumab-induced radiosensitization. Melanoma Res. 2015. Vol. 25(6). P. 555-558. doi: 10.1097/CMR.0000000000000191.

87.        Chang X. Radiofrequency ablation of primary tumors combined with anti-programmed death-1 (PD-1) antibody results in an enhanced antitumor effect against advanced renal cell carcinoma. J. Urology. 2016. Vol. 195. No.4S, Suppl. Abstract MP03-07.

88.        Chen Z., Shen S., Peng B., Tao J. Intratumoural GM-CSF microspheres and CTLA-4 blockade enhance the antitumour immunity induced by thermal ablation in a subcutaneous murine hepatoma model. Int. J. Hyperthermia. 2009. Vol. 25(5) . P. 374-382. doi: 10.1080/02656730902976807.

89.     Chen D.S., Mellman I. Oncology meets immunology: the cancer-immunity cycle. Immunity. 2013. Vol. 39. P. 1-10.

90.     Kim J.M., Chen D.S. Immune escape to PD-L1/PD-1 blockade: seven steps to success (or failure). Annals of Oncology. Vol. 27. P. 1492-1504. 2016 doi:10.1093/annonc/mdw217.

91.        Ferguson T.A., Choi J., Green D.R. Armed response: how dying cells influence T-cell functions. Immunol. 2011. Vol. 241. P. 77-88.

92.        Golden E.B., Apetoh L. Radiotherapy and immunogenic cell death. Semin. Radiat. Oncol. Vol. 25(1). P. 11-17. doi:10.1016/j. semradonc.2014.07.005.

93.        Tesniere A., Apetoh L., Ghiringhelli F., Joza N., Panaretakis T., Kepp O. et al. Immunogenic cancer cell death: a key-lock paradigm. Curr. Opin. Immunol. 2008. Vol. 20. P. 504-511. doi:10.1016/j.coi.2008.05.007.

94.        Chalovich J.M., Eisenberg E. NIH Public Access. Biophys. Chem. 2012. Vol. 257. P. 2432-2437.

95.        Curley C.T., Sheybani N.D., Bullock T.N., Price R.J. Focused Ultrasound Immunotherapy for Central Nervous System Pathologies: Challenges and Opportunities. Theranostics. 2017. Vol. 7(15) . P. 3608-3623. doi: 10.7150/thno.21225.

96.        Blank C.U., Haanen J.B., Ribas A., Schumacher TN. CANCER IMMUNOLOGY. The “cancer immunogram”. Science. 2016. Vol. 352(6286). P. 658-60. doi: 10.1126/science.aaf2834.




Теги: злокачественные новообразования
234567 Начало активности (дата): 04.10.2024 17:23:00
234567 Кем создан (ID): 989
234567 Ключевые слова:  злокачественные новообразования, метастазы, ультразвуковая аблация, иммунотерапия, абскопальный эффект
12354567899

Похожие статьи

КТ-навигация как залог успеха бронхобиопсии при периферических образованиях в легких
Рентген на дому 8 495 22 555 6 8
Гамартома легкого: моноцентровый аналитический обзор 142 случаев
Дискогенная пояснично-крестцовая радикулопатия
Факторы, приводящие к повторному хирургическому вмешательству при метастатическом поражении длинных костей
Статьи по заболеваниям
  • Травматология
  • Перелом шейки бедра
  • Туберкулез
Популярные статьи
  • Как выглядит половой акт, секс в аппарате МРТ - видео 28.10.2011
    Сколько держать лед при сильном ушибе? 17.12.2012
    Программа для просмотра МРТ и томограмм 28.10.2016
    Подготовка к рентгену пояснично-крестцового отдела позвоночника 03.10.2015
    Протокол контроля качества работы рентгеновских компьютерных томографов
    Ушиб пальца руки 11.02.2014
    МРТ во время полового акта 02.09.2016
    Мази от ушибов и травм 03.12.2016
    Повязки и перевязочные материалы 19.06.2013
    Какие журналы нужно вести в рентгенкабинете 03.04.2012
Популярные разделы
  • Травматология
  • Травмы и заболевания тазобедренных суставов
  • Артрозы и артриты
  • Все о боли
<
МосРентген Центр | Цифровой рентген на дому
© 1999–2025. Сайт Александра Дидковского
Рейтинг@Mail.ru Яндекс.Метрика
  • 8-495-22-555-6-8
  • 1@trauma.ru
  • Прайслист
  • Контакты
  • WhatsApp
  • ЦИФРОВОЙ РЕНТГЕН НА ДОМУ
    8-495-22-555-6-8
    при переломе шейки бедра и пневмонии от компании МосРентген Центр - партнера Института имени Склифосовского
    подробно
  • РЕНТГЕН ПОД КЛЮЧ
    Лицензирование рентгеновских кабинетов
    подробно
  • Продажа цифрового рентгена
    Рентген дигитайзер AGFA CR12-X - оцифровщик рентгеновских снимков
    подробно